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大多數腫瘤分析檢測工作流程使用福爾馬林固定和石蠟包埋 (FFPE) 的組織活檢樣本,該過程會給組織標本中的核酸帶來化學損傷。從 FFPE 組織中提取的 DNA 中可能會發(fā)現脫嘌呤、脫嘧啶、脫氨、氧化、缺口和雙鏈斷裂,從而導致核酸碎片化。胞嘧啶脫氨會導致測序結果不正確,并可能影響 FFPE DNA 樣本中較低頻率變異的準確識別,但所有類型的損傷都會影響測序質量(例如覆蓋均勻性)和下游基因組分析。1
為了評估核酸損傷和提取方法對NGS的影響為了評估結果并驗證分析工作流程對 FFPE 樣本的適用性,應包括全流程 FFPE 參考材料。但是,它應該代表真實樣本才有用。1 LGC Clinical Diagnostics開發(fā)了一系列此類參考材料,用于分析 DNA 變體、RNA 融合和復雜的基因組特征(TMB、MSI 和 HRD),包括模擬存檔組織活檢標本損傷和尺寸分布的受損 FFPE DNA 產品。
從 FFPE 樣本中獲得的 DNA 產量、完整性、測序指標和測量的變異等位基因頻率 (VAF) 可能因使用的提取試劑盒而有很大差異。2這種差異可能是由于不同片段長度的 DNA 的相對提取效率不同,以及在使用相應試劑盒進行 DNA 分離過程中逆轉甲醛損傷的偏差。
雖然 Seraseq ® FFPE 參考材料保證每卷 DNA 產量 >100 ng 或 RNA >400 ng,但這僅適用于使用與 LGC Clinical Diagnostics 用于產品發(fā)布測試的相同提取試劑盒的情況,因為產量可能會有所不同(見表 1)。雖然較低的產量不會影響下游結果,但最大限度地提高核酸提取的性能可確保將足夠的樣本輸入到不同的測序方案中。以下是一些有助于防止產量低和樣本損失的建議,重點是 DNA 提取。
FFPE DNA 提取產量(ng) | |||
材料 | QIAamp DNA FFPE 組織 | 麥克斯韋 RSC DNA FFPE | FFPE 預處理 |
Seraseq ®破壞 FFPE 腫瘤 DNA | 177±50 375±148 # | 384±51 290±82 # | 551±151 # |
Seraseq ® FFPE HRD 高陽性 | 165±41 | 136±55 | 161±22* |
Seraseq ® FFPE HRD 低陽性 | 235±68 | 122±39 | 293±44* |
Seraseq ® FFPE HRD 陰性 | 505±191 | 200±77 | 315±10* |
Seraseq ®淋巴瘤 FFPE DNA | 193±44 # | 124±11 # | 不適用 |
FFPE RNA 提取產量(ng) | |||
材料 | AllPrep DNA/RNA FFPE | 麥克斯韋 RSC RNA FFPE | 安科特福爾馬普 |
Seraseq ® FFPE 融合 RNA v4 RM | 1021±240 774±178* | 170±28 238±77* | 1177±255 |
Seraseq ® FFPE WT | 不適用 | 不適用 | 449±35 |
Seraseq ®受損 FFPE WT | 不適用 | 不適用 | 1278±187 |
表 1.不同 Seraseq ® FFPE 參考材料獲得的 DNA 和 RNA 產量的差異。對于所有值,± 表示一個標準差;除非另有說明,否則數據代表單個批次的材料。#所有發(fā)布批次的平均內部數據 * 來自外部實驗室的數據。
Seraseq ®樣本顆粒比臨床樣本的顆粒更小、更透明,可能難以看到。采取以下預防措施可能會有所幫助:
將 Seraseq ®樣本與臨床樣本一起提取,以便直觀地追蹤樣本。
在管子和蓋子的外側做上標記,然后將其放入離心機中,使標記朝向轉子的外側(預計有沉淀物的位置)。
當使用需要丟棄上清液的協議時,如果對沉淀的位置有任何疑問,請在前幾次運行中保存上清液。
使用自動化方案提取的 DNA 產量往往低于相應的手動方案。使用自動化提取系統時,我們始終建議使用參考材料(例如 Seraseq ® WT FFPE 材料)驗證新的自動化儀器。
可以將 1 mL 二甲苯直接加入裝有卷曲的產品管小瓶中(圖 3A),以避免卷曲轉移。撕掉產品管標簽可能會有所幫助,以便更好地查看管內的內容。如果需要將卷曲轉移到新小瓶中,我們建議嘗試將產品小瓶放在另一個小瓶頂部,輕拍它,避免使用鑷子?;蛘?,您可以先在原始管中溶解卷曲,然后將所有內容物轉移到新管中。
脫蠟后去除二甲苯時,要謹慎。只取出 900 uL,其余留在小瓶中,以免擾亂沉淀物。在加入乙醇之前,在化學罩內風干。
只有在加入乙醇沉淀后,DNA 才會顯現出來。如果不容易看見,可在渦旋后倒置小瓶幾次以觀察它。沉淀物應呈白色膠狀物質(圖 3B)。離心后,沉淀物應在管底呈顆粒狀清晰可見(圖 3C)。
離心沉淀后,盡可能多地除去上清液,但要小心避免擾動和/或吸出沉淀物。使用較小尺寸的移液器可能會有所幫助。
熔化和脫蠟孵育溫度至關重要;溫度過高會導致 DNA 產量降低,因為樣本中單鏈 DNA 過多。將小瓶密封也很重要。
沒有沉淀,因此丟失樣品的風險較低。然而,在 RNAse 之后去除水層時必須小心一種處理方法,避免轉移任何變性的蛋白質界面,因為它會堵塞墨盒并降低產量。
遵循與 QIAamp ® DNA FFPE 組織試劑盒類似的總體預防措施
在用蛋白酶 K 處理之前將沉淀物重新懸浮在緩沖液 PKD 中時,可以通過用力添加緩沖液將其去除來實現可視化。
如果不是同時提取 RNA,則在去除上清液時要謹慎,以免丟失 DNA。
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